NAMD入门教程一.doc

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1、预定目录1. 分子动力学模拟概论 1.1 分子动力学模拟的发展1.2 分子动力学模拟的基本原理1.3 分子动力学模拟相关软件2. 分子动力学入门2.1 基本设置2.2 生成蛋白质结构文件（PSF）2.3 蛋白质的溶质化2.4 球状水体中泛素（Ubiquitin）的分子动力学模拟2.5 立方水体中泛素（Ubiquitin）的分子动力学模拟2.6 简单的结果分析3. 分析方法3.1 平衡态分子动力学模拟分析3.1.1 每个残基的RMSD值3.1.2 麦克斯韦-波尔兹曼（Maxwell-Boltzmann ）能量分布3.1.3 能量分析3.1.4 温度分布3.1.5 比热分析3.2 非平衡态分子动力

2、学模拟分析3.2.1 热扩散3.2.2 温度回音4 人工操纵的分子动力学模拟（SMD）4.1 除去水分子4.2 恒速拉伸4.3 恒力拉伸4.4 结果分析1. 分子动力学模拟概论分子动力学模拟（Molecular Dynamics Simulation）是指利用计算机软件，根据牛顿力学的基本原理，模拟大分子的相互作用和运动变化的研究方法。生命科学的研究往往离不开各种仪器，试管和活的有机体，通过实验手段研究生命现象背后的规律。那么，为什么我们要将生命大分子抽象成二进制数据，由计算机软件模拟其行为呢？首先，从理论基础上讲，我们能够使用计算机模拟生物大分子的行为。生物体系非常复杂，但生物大分子如蛋白质

3、，脂肪，多糖等也是许多原子由化学键连接起来形成的，所有原子的运动规律都符合量子力学方程，在较大尺度上也近似符合牛顿力学方程，它的行为是要受物理学基本规律支配的。因此我们可以将利用纯数学的手段，近似模拟生物大分子的行为.其次，从研究需要上讲，我们不仅希望从宏观上研究生命大分子溶液体系的行为，还想直接研究单个生物大分子在原子尺度上的行为，而这是目前的实验仪器难以达到的。比如，我们希望直接研究蛋白质从伸展的肽链折叠成球形的具体过程，使用仪器手段只能收集到间接的数据，但使用软件模拟则可以形象直观的模拟出整个折叠过程，可以具体求算每个键能、键角的变化，研究某几个氨基酸残基之间的相互作用，以及对蛋白质折叠

4、的意义。总之，目前的生物学研究需要我们利用计算机模拟生物大分子的行为，以弥补实验手段的限制，希望能自下而上地阐明生物大分子结构和功能的关系。最后，从实际意义上讲，分子动力学模拟可以用来指导实验，提供思路和理论依据；分子动力学模拟所得结果的正确性也需要回到实验验证。这样，我们可以将分子动力学模拟和实验研究结合成一个整体，从而能够全面地，深入地研究生命现象的本质规律。1.1 分子动力学模拟的发展*暂缺相关文献1.2 分子动力学模拟的基本原理*暂缺相关文献1.3 分子动力学模拟相关软件随着分子动力学模拟技术的飞速发展，逐步形成了一些商品化的软件。应用于生物大分子领域的商品化分子模拟软件主要有Insi

5、ght以及Sybyl，分子模拟是其中的一个重要的模块。Insight中分子动力学模块使用的是由美国哈佛大学Martin Karplus研究小组等开发的CHARMM（Chemistry at Harvard Macromolecular Mechanics），同时它本身也是一个商品化的软件。而Amber（Assisted Model Building with Energy Refinement）则是另一个非常有名分子动力学模拟软件，它是由美国UCSF的Kollman教授的课题组开发的，商业化程度和易用性要好于CHARMM，当前版本9.0。以上两个研究小组都为其软件开发了相应的力场，并且现在已经

6、成为分子动力学模拟的经典力场。此外免费和部分免费的软件有NAMD，Gromos，Gromacs，DL_POLY，Tinker等。在上述软件中，我们选择NAMD作为本章的示范软件。NAMD是由美国伊利诺斯大学理论与计算生物物理研究组开发的一套分子动力学模拟软件，适用于计算生物大分子，并行计算效率非常高，可以使用Amber，CHARMM，X-PLOR，GROMACS，OPLS等多种力场，而且可以兼容Amber，CHARMM的文件格式。NAMD支持几乎所有操作系统，而且免费获取，开放源代码。如配合分子可视化、结果分析软件VMD以及格点计算软件BioCoRE则可使用更多、更强大的功能，进行更大规模的计

7、算，可以说集众多优势于一身。不仅如此，利用NAMD还可以进行极具特色的IMD（Interactive Molecular Dynamics，交互式分子动力学模拟）和SMD（Steered Molecular Dynamics，可控式分子动力学模拟）。在本教程中，我们将首先讲解使用NAMD进行分子动力学模拟的基本流程，然后讲解经典的结果分析方法，最后我们将简单介绍SMD的基本思想和过程。2. NAMD分子动力学入门2.1 软件基本设置NAMD的最新版本是2.6版，可以从 免费得到（需要进行免费注册）。此外，我们还需要VMD作为分子可视化和辅助分析软件，可以从 免费得到，最新版本是VMD1.85

8、。NAMD安装方法：事实上NAMD是不需要安装的。请新建文件夹namd-tutorial, 在该目录中新建文件夹NAMD，下载完成NAMD2.6软件包后，将压缩文件解压到文件夹NAMD中，就可以使用。 下文中为了叙述方便，我们将默认读者的NAMD主程序位于./namd-tutorial/NAMD 目录中（安装VMD程序时可以安装到任意目录，不影响教程操作）。此外，本教程还需要一系列教程文件。所需文件均可以从 下载（图）下载完成教程所用文件后，请把所有内容解压到namd-tutorial目录下，此后的部分我们将默认教程所用文件位于./namd-tutorial 目录中。完成上述准备之后，请打开W

9、indows资源管理器，namd-tutorial目录的结构应该如下：（如果目录形式不一致，请务必进行调整）该文件夹中有我们进行动力学模拟所需的所有文件。最后，还需要交代的是，NAMD不同于我们所熟悉的大多数Windows软件：它不具有图形界面。打个比方说，我们平常使用Word，Excel，Photoshop等有图形界面的软件，好像是面对面聊天；而现在使用不具有图形界面的NAMD就像是书信往来：动力学模拟的所有参数设定都需要用户通过一个文本文件通知NAMD，NAMD进行处理计算，然后再通过许多输出文件输出结果。不借助其他软件，用户无法直接看到NAMD的工作状态。由于进行动力学模拟的准备和结果的

10、可视化分析，必不可少的软件是VMD，下面的讲解中也将大量用到VMD。我们假定读者已经对VMD的基本操作有一定的了解。VMD的入门教程可参见本章附录。下面，我们将使用NAMD进行简单的分子动力学模拟，并进行初步的分析。我们将要进行动力学模拟的分子是一个76个氨基酸的小肽：泛素。知识连接：泛素“死亡之吻”泛素是一个由76个氨基酸组成的高度保守的多肽链, 因其广泛分布于各类细胞而得名。泛素共价地结合于底物蛋白质的赖氨酸残基，被泛素标记的蛋白质将被特异性地识别，并在蛋白酶体中迅速降解。泛素因此得名“死亡之吻”。因为被其标记的蛋白都摆脱不了被降解的厄运。随着研究的进一步深入，蛋白质降解过程中泛素的枢纽作

11、用越来越得到重视。蛋白质降解异常与许多疾病（恶性肿瘤,神经退行性疾患等）的发生密切相关。而泛素在蛋白质降解中的作用机制如能被阐明，将对解释多种疾病的发生机制和有重要意义。Hershko、Ciechanover、Rose三名杰出科学家在泛素标记的蛋白质降解方面做出了突出贡献，他们荣获2004年度诺贝尔化学奖。使用NAMD进行分子动力学模拟之前，我们需要为NAMD准备好各种必须的数据文件，以供NAMD使用。这些文件包括： 蛋白质分子的PDB文件。该文件负责储存蛋白质中所有原子的坐标。在后续课程中我们还会了解到，PDB文件还可以储存原子运动的速度等信息。 蛋白质分子的PSF文件。该文件负责储存蛋白质

12、的结构信息。注意PDB文件只记录原子的空间位置，并不储存蛋白质中原子之间的成键情况。成键情况由PSF文件负责记录。 力场参数文件(force field file)。力场参数文件是分子动力学模拟的核心，文件中的数学方程决定了原子在力场中的受力如何计算。常用的四种力场是CHAEMM, X-PLOR, AMBER 和GROMACS。NAMD可以使用以上任何一种力场进行分子动力学模拟。 配置文件（configuration file）配置文件的目的是告知NAMD分子动力学模拟的各种参数，比如PDB文件和PSF文件的储存位置，结果应当储存在哪里，体系的温度等等上述四种文件中，PDB文件通常是从蛋白质结

13、构数据库（Protein Data Bank）中获得。力场参数文件也可以从网上下载， 而PSF文件和用户配置文件是用户根据具体要求自己生成的。下面我们将首先制作蛋白质结构文件（PSF）。2.2 生成蛋白质结构文件（PSF）1、单击 开始菜单程序 VMD，打开VMD窗口2、在VMD主窗口中，单击 File New Molecule 打开Molecule File Browser对话框；单击Browse按钮，在弹出的文件浏览中找到 namd-tutorial/1-1-build 文件夹，在此文件夹中选择1UBQ.pdb，单击Load按钮载入1UBQ.pdb。提示：关于文件后缀名如果浏览文件时看不到

14、“.psf”“.pdb”等后缀名，可以在“我的电脑”中选择“工具”“文件夹选项”，在“查看”选项卡中取消“隐藏已知文件类型的扩展名”。强烈推荐读者取消这一项，因为这还涉及到下文中的许多操作。载入之后在图形窗口（VMD 1.8.5.OpenGL Display）中应当可以看到下图（图）：可以看到，所有的氧原子用红色表示，碳原子以天蓝色表示（碳原子所连的键也是天蓝色，所以整个蛋白骨架为天蓝色），硫原子以黄色表示。注意到没有出现氢原子，这是因为此结构是由X射线晶体衍射得来的，而X射线衍射一般得不到氢原子的精确位置。注意：蛋白周围的红点实际上是水分子，由于没有氢，所以仅显示出一个一个的氧原子。我们只需

15、要蛋白质分子的结构，因此下面我们将首先除去pdb文件中带有的水分子。 4、单击 Extension TK Console 菜单项，弹出VMD Tk Console窗口。首先用cd命令改变当前目录到namd-tutorial /1-1-build 下。然后输入下列命令：set ubq atomselect top protein$ubq writepdb ubqp.pdb(每输入一行命令后按回车键，下同。另外，尤其要注意空格的有无和空格的位置，否则空格位置不对可能造成命令执行错误)提示：VMD TK Console（VMD控制台）中改变当前目录的方法 在Windows命令行模式中和VMD TK

16、Console 中都是用cd命令改换当前目录的。但是注意二者的使用方法不同。这里简单说明VMD TK Console 中改变当前目录的方法，Windows命令行改变目录的方法将在后面说明。在VMD TKConsole中，改变目录的命令十分简单。无论是改变到哪一个目录，只需要输入：cd 目标目录比如本例中，假设需要改变目录到 E:/namd-tutorial/1-1-build ，无论当前目录是什么，只需要在VMD TKConsole中输入以下命令即可：cd e:/namd-tutorial/1-1build输入以上命令之后，VMD已经在1-1-build目录下生成了文件 ubqp.pdb。这一

17、PDB文件仅包含泛素蛋白，不含水分子。5、在VMD主窗口中单击1UBQ.pdb，选择MoleculeDelete Molecule菜单项删除当前分子。6、下面我们将生成泛素蛋白的psf文件。注意：VMD组件中实际上提供了一个全自动的psf文件生成器(选择ExtensionsModelingAutomatic PSF Builder菜单项)。但我们将人工制作所需要的psf文件，以让读者明白制作的详细流程。制作时，需要使用VMD提供的psfgen软件包。7、首先，打开写字板，输入以下内容：package require psfgentopology top all27_prot_lipid.inp

18、pdbalias residue HIS HSEpdbalias atom ILE CD1 CDsegment U pdb ubqp.pdb coordpdb ubqp.pdb Uguesscoordwritepdb ubq.pdbwritepsf ubq.psf8、输入完成之后，保存文件。注意文件保存在1-1-build目录中，文件名为ubq.pgn，文件类型选择文本文档。然后退出写字板。这样我们便制作了pgn文件，这一文件可以被psfgen软件包所识别，并处理成我们想要的psf文件。我们需要在VMD中使用该文件调用psfgen数据包下面我们详细介绍一下刚刚输入的每一行命令的意义：packa

19、ge require psfgen：通知VMD我们将要调用psfgen数据包topology top all27_prot_lipid.inp：载入拓扑文件 top_all27_prot_lipid.inppdbalias residue HIS HSE：改变组氨酸残基名，使得残基名称能够和拓扑文件中的一致。在pdb文件中组氨酸残基名是HIS,而在拓扑文件中组氨酸残基名为 HSE, HSD, HSP 三种。分别对应组氨酸的三个不同的带电荷形式。pdbalias atom ILE CD1 CD：改变异亮氨酸中的原子名。pdb文件中异亮氨酸碳的名称为CD1，而拓扑文件中原子名应该为CD。segme

20、nt U pdb ubqp.pdb：生成一个集合（segment）U，包含ubqp.pdb中的所有原子。coordpdb ubqp.pdb U：从ubqp.pdb中读取坐标，比较各个原子的名称是否对应，然后旧的集合名被改换成新的名称“U”。guesscoord：根据拓扑文件推测缺少的原子（氢原子）的空间位置。writepdb ubq.pdb：生成新的pdb文件，包含所有原子的坐标，包括刚刚推测出的氢原子。writepsf ubq.psf：生成psf文件，该文件包含蛋白结构的全部信息。知识链接：组氨酸的三种离子模式知识链接：PDB文件中原子的命名方式9、如果刚刚关闭了VMD，则重新打开，改变目录

21、至1-1-build。然后输入以下命令：source ubq.pgn这样我们就成功得到了含有氢原子的psf文件。同时，可以看到VMD TKConsole中显示出系统返回的信息。信息显示我们的系统中有1231个原子，631个原子的坐标是推测的（图）。现在在你的1-1-build文件夹下应当有ubq.pdb和ubq.psf两个文件。到此为止，我们已经成功制作了下一步分子动力学模拟所需的psf文件。2.2 蛋白质的溶质化显然在真实情况下，蛋白质不是在真空中存在下面。所以我们需要把蛋白质放入一个水环境中，以更真实的模拟生物体内的环境。我们可以使用两种水体环境进行动力学模拟： 球状水体（water sp

22、here）。水体包围蛋白质，四周则是真空，动力学模拟时没有周期性边界条件（periodic boundary condition） 立方水体(water box)。立方水体是正六面体形状的水体（不一定是正立方体）。使用立方水体需要我们设定周期性边界条件。 2.2.1 生成球状水体（water sphere）我们将使用一个脚本文件建立球状水体。脚本文件在1-1-build目录下，文件名是wat_sphere.tcl。1、如果刚刚关闭了VMD，则重新打开，改变目录至1-1-build。然后输入以下命令：source wat_sphere.tcl输入之后VMD将会调用脚本文件，之后VMD会反馈一系列

23、信息（图），2、由所给的信息我们可以看出，VMD生成了两个文件：ubq_ws.pdb文件和ubq_ws.psf。 在最后两行还给出了生成的球状水体的质心坐标（center of mass of sphere）和球状水体的半径(radius of sphere)，精确到小数点后第十位。记下这些数字，以后我们还会用到。这时在图形窗口中却会出现一个立方水体包围的蛋白质分子（图）。不过没有关系，在VMD主窗口中可见分子名为del_water，并不是我们所要的结果。我们的最终结果已经储存在1-1-build中，文件名分别为ubq_ws.pdb和ubq_ws.psf。3、下面我们将看一下生成的球形水体究竟

24、是什么样子的。在主窗口中单击del_water 分子，选择Molecule Delete Molecule 菜单项删除该分子；然后选择 File New Molecule，单击Browse 按钮，在1-1-build目录下找到ubq_ws.pdb文件，单击Load载入该蛋白，可以看到球状水体包围的蛋白（如图）。说明我们已经成功地生成了球状水体包围的泛素分子。 2.2.2 生成立方水体（water box）下面我们将把泛素放入一个立方体状的水环境中。我们使用的是VMD提供的solvate软件包。该软件包位于VMD的/plugins/noarch/tcl目录下。不过我们不需要自己找到它。只要通知V

25、MD我们将使用该软件包，VMD就会载入它。1、打开VMD，选择 ExtensionsTK Console菜单项，在VMD TKConsole 窗口中输入：package require solvate这时VMD就会载入solvate软件包。窗口返回数字：1.2 说明我们所使用的软件包是solvate 1.2。确保当前目录是1-1-build，否则用cd命令改变当前目录至1-1-build，然后输入:solvate ubq.psf ubq.pdb t 5 o ubq_wb等待运行结束，VMD就调用solvate将ubq.pdb和ubq.psf所储存的蛋白放入一个立方水体中。在图形窗口可以见到一个

26、立方形的水体包围蛋白（如图）。参数 t 5 通知程序如何确定立方体的各边长。方法是在每个坐标方向上选择坐标最大的那个原子，然后再延伸5A，即为该方向立方体面的边界。注意：生成的立方水体并不一定是正立方体。各边长取决于坐标最大（距离原点最远）的原子的位置。还有一个参数 o ubq_wb是为了通知程序生成的文件名。运行结束后我们得到的两个文件就是ubq_wb.psf 和 ubq_wb.pdb。2、在VMD TkConsole中输入：set everyone atomselect top allmeasure minmax $everyone这时返回的数值是整个体系中离原点最近的点和最远的点的坐标。

27、我们需要的是整个立方体的中心，可以自己计算也可以用下面的命令：measure center $everyone这时返回的三个数值就是体系的中心。记下这三个数值，我们以后还会用到。返回值如图：在开始下一节之前，我们要将生成的文件拷贝到common公用目录下以方便访问。在Windows资源管理器中找到1-1-build目录，按Ctrl选择以下六个文件：ubq.pdb, ubq.psf, ubq_ws.pdb, ubq_ws.psf, ubq_wb.pdb, ubq_ws.psf，然后把它们拷贝到namd-tutorial/common目录下。提示：此处生成的立方水体事实上过小了。在实际应用时，应当

28、保证水体足够大，以防止蛋白在拉伸运动时超出水环境。也要避免在使用周期边界条件时蛋白和四周各个单元的蛋白镜像相碰撞。周期边界条件的详细知识见下文。 此外，还应当注意的是在实际应用时应当在水环境中放入离子。特别是当蛋白质的净电荷不为0时，更应当设定离子数目以使得整个体系是中性的。在放入离子时应当将它们放在体系中静电势能的最低点，以节省计算时间。因为离子总会向势能最低点自发运动。2.3 球状水体中泛素（Ubiquitin）的分子动力学模拟在这一节中，我们将要对球状水体的泛素分子进行最简单的动力学模拟。首先，我们要进行的分子动力学模拟的目的是什么？我们将泛素放入球状水体中，水体周围是真空，然后NAMD

29、会根据我们设定好的温度值按照Boltzmann-Maxwell分子速率分布给各原子赋予一定的初始速度，接下来就是要根据牛顿力学方程，求解个水分子以及蛋白质中各原子的运动轨迹。我们得到的结果，就是模拟泛素这一小肽在溶液状态下的运动状态。知识链接：能量最小化和能量平衡（Minimization and Equilibration）本次动力学模拟实际包括两个过程：能量最小化和能量平衡（Minimization and Equilibration）。能量最小化时，NAMD设定各原子的速度为0，然后不断改变各个原子的相对位置并计算体系总能量，搜索最低势能点，作为分子动力学模拟的初始状态。这一过程是不记录

30、原子运动轨迹的。因为原子的位置改变只是因为NAMD需要搜索最低能量状态，而不是真实的相互作用引起的运动。能量平衡是让蛋白质和水分子在设定好的环境温度（即原子的速度）下相互作用，达到能量平衡分配，整个体系达到稳定状态（熵达到极大值）。为什么需要首先进行能量最小化？这是因为我们提供的体系有可能包含极度扭曲，拉伸或压缩变形的键和键角。它们是解析结构或同源模建时引入的错误结构，含有很高的能量。如果不首先进行最小化，直接进行能量平衡，蛋白质会和水分子相互作用，恢复伸展状态，释放掉这些错误结构中的高能量。这一过程是没有意义的因为它是错误结构引起的反应，并不是蛋白质在溶液中的真实状态。从而就浪费了计算时间。

31、不仅如此，能量释放引起的剧烈运动和相互作用最终可能使得蛋白质的行为不符合溶液中的真实行为。所以有必要在能量平衡之前，首先人为搜索能量最低点，作为分子动力学模拟的初始状态。一般地，分子动力学模拟包括多个能量最小化和平衡过程。通常我们会首先将蛋白质固定而仅允许水分子运动，进行能量最小化和能量平衡；然后允许蛋白质和水分子同时运动，再次经历能量最小化和能量平衡这一循环。第一步的目的是使水分子达到能量最小，这通常是一个很快的过程。然后再放开蛋白质，使整个系统达到能量最小。这样可以减小计算量，并防止由于一开始蛋白结构很不稳定而结果产生假象。在上一节中我们已经获得了所需要的ubq_ws.pdb 和ubq_w

32、s.psf 两个文件。对照本章开始提到NAMD所需的四个文件知，还需要有配置文件就可以提交NAMD进行动力学模拟了。（力场参数文件在common文件夹中）。下面我们将首先得到配置文件。2.3.1 配置文件前面我们把使用NAMD比作写信，这里的“信”就是指的配置文件。配置文件记录了进行动力学模拟所需的全部参数和设置，NAMD只要得到这一文件就可以按照相应指令进行操作。对于本次动力学模拟，在namd-tutorial/1-2-sphere 目录下可以得到已经预先制作完毕的配置文件。下面我们将要仔细讲述文件的内容。打开写字板，在菜单中选择 文件打开，找到1-2-sphere 目录，文件类型选择全部文

33、件（图），然后打开文件ubq_ws_eq.conf。这个文件看起来好像很复杂，但是我们会仔细分析讲解每一部分的含义。注意：在配置文件中，每一行开头如果是“#”，则本行内容会被当作注释对待，NAMD会忽略其中的内容。因此为了便于区分，我们用#把文件分割成几大部分。如第一部分是：# JOB DESCRIPTION #意思是这一部分是对所提交工作的描述。1、大体浏览一下，可以发现整个文件被分成了以下几部分： 工作描述（job description） 可调参数 （adjustable parameters） 动力学模拟参数（simulation parameters） 附加参数（extra para

34、meters） 执行脚本 （execution script）它完整的记录了输入的蛋白质结构文件（pdb和psf文件）的位置，输出结果文件的文件名，以及动力学模拟时的环境温度，截止点，步长等各种参数。在进行动力学模拟时只需要提供给NAMD一个配置文件，NAMD就可以找到输入文件，调整好各种参数，按照要求进行动力学模拟之后输出结果。2、然后，首先我们来看第一部分：Job Description。这一部分每一行开头都有#，因此只包括注释。它描述的是这一配置文件的目的：Minimization and Equilibration of Ubiquitin in a Water Sphere。就相当于

35、一片文章的题目。3、Adjustable Parameters 这一部分包括5项参数： structure: 给出调用的psf文件的位置 coordinates：给出调用的坐标文件（即pdb文件）的位置 set temperature 310: 定义一个变量temperature，并赋值310。以后如果要使用环境温度值310，只需要用$temperature 代替。这和c语言中的预处理命令#define有些类似。 set outputname ubq_ws_eq：新建一个变量outputname，并赋值ubq_ws_eq。作用同上。 firsttimestep:设定动力学模拟时起始timest

36、ep的数值。在重新开始进行一个被中断的动力学模拟时，这一设定是非常有用的。如果前一次动力学模拟结束时的timestep是533，那么这一次的起始值显然应该是534。4、Simulation Parameters 这一部分包括许多参数，可以分成以下几部分： Input- paraTypeCharmm: 说明参数文件是否是CHARMM力场格式的。设置为on。- parameters: 从给出的力场参数文件中调用参数（此例中，力场参数文件为./common/par_all27_prot_lipid.inp）- temperature: 设定环境的起始温度（K）。如上所述，在这里$temperatur

37、e 相当于310。设定这一数值后，NAMD会根据Maxwell分子速率分布给体系中的分子分配运动速率。 Force-Field Parameters- exclude: 说明哪一种原子-原子相互作用可以忽略。这里的设定值是 scaled1-4。成键相邻原子的编号方式见图。scaled1-4就是说如图中的原子1-2，1-3，2-3之间的相互作用被完全忽略，而原子1-4的相互作用被弱化。- 1-4scaling: 刚刚提到了原子1-4之间的相互作用会被弱化。这个参数就是为了说明弱化的程度。取值在01之间，0表示完全忽略，1表示不进行弱化。 - cutoff：设定范德华力和静电力的截止点。如果不设定

38、此值，NAMD会计算整个体系中任意两个原子的范德华力和静电力相互作用，这显然是没有必要的。注意：如果Particle Mesh Ewald Sum 设定为on，cutoff的定义就会改变，在此不详细叙述。 - switching：设定是否使用过渡函数（switching function），使得在截止点处范德华力和静电力不会突然降低至0，而是平滑的过渡至0。 - switchdist：设定在哪一点静电力和范德华力函数开始使用过渡函数修正（switch function）以使这两个函数可以平滑过渡，在cutoff处降低为0。 - pairlistdist: 这一设定是为了使得计算更快进行。如果不

39、设定这个值，对于体系中的某个原子，NAMD需要遍历搜索整个体系以找出和该原子有相互作用的所有其他原子。设定之后，在计算某个原子的受力时，NAMD将只搜索设定范围之内的原子。设定值的单位是A。注意这个值必须要大于cutoff值。 图是以上概念的图示说明。 Integrator Parameters - timestep：说明所使用的步长数值。分子动力学模拟的基本原理还是求解牛顿力学方程，但是并不能做到连续求解，而只能每隔一段间隔求解一次，最后生成原子的运动轨迹。步长值就是求解的时间间隔。以一个飞秒（fs,femtoseconds）为单位。2.0即为2fs。- rigidBonds：设定与氢原子相

40、连的哪一种键是刚性的（不会来回振动）。这里设定值是all，说明所有和氢原子相连的键都被认为是不振动的。知识链接：Rigid Bonds为什么要设定RigidBonds？这是因为我们设定的步长是2飞秒。在分子动力学模拟时，键的转动，振动，原子的位移等等速度并不相同。而步长数值显然应该由最快的那一种运动的时间尺度决定。在各种运动形式中，键长的伸缩和键角的扭曲是最快的。键长振动一般是每10-100飞秒一次。其中，最快的当然是与氢原子相连的键长的振动，一般是10飞秒一次，而我们的步长是2飞秒，几乎在一个数量级上。因此无法精确描述这样的键长振动。所以需要先设定认为这些键不振动。其实也相当于取键长伸缩振动

41、的平均值作为固定键长。大分子的功能和行为一般与较慢的分子构象变化和分子运动关系密切，但和快速的原子振动关系较小。所以认定键长振动不存在也是可以接受的，只是对于精确的分子动力学模拟而言应当尽量避免。对于任何的分子动力学模拟，步长应该是体系中最快运动周期的1/10以下。- nonbondedFreq: 设定每隔多少步长计算一次非成键相互作用（nonbonded interactions）。适当调整这个值可以节约计算时间。- fullElectFrequency: 设定每个多少步长计算一次总体静电相互作用（full electrostatic interactions）。- stepspercycl

42、e: 前面提到过，每个原子都有一个pair list，即和它有相互作用的所有原子的列表。这个列表显然是动态变化的。列表更新的周期叫做一个循环（cycle）。这个值设定的是每多少步长更新一次列表，完成一次循环。 Constant Temperature Control - langevin: 设定动力学模拟时是否使用Langevin 动力学。这里设定为on。 - langevinTemp: 设定一个温度值，使用Langevin 动力学将原子保持在恒定的该温度。 - langvinHydrogen: 设定是否对于氢原子也应用langevin动力学。 Output - outputName：每进行一

43、次动力学模拟，NAMD会输出多个文件。这个参数设定这些文件的前缀名（如ubq.pdb，ubq就是前缀名）都为ubq_ws_eq。NAMD输出的文件包括：一个后缀名为“.coor”的文件，储存经过动力学模拟后的所有原子的坐标；一个后缀名为“.vel”的文件，储存系统动力学模拟结束时所有原子的瞬时速度。所以运行结束后我们可以得到两个文件：ubq_ws_eq.coor 和 ubq_ws_eq.vel。- restartfreq: 在进行分子动力学模拟时，NAMD还会创建恢复文件（restart file），类似于Word的自动保存，使得用户在动力学模拟意外停止的时候可以用恢复文件继续进行模拟。这个参

44、数就是设定每过多长个步长自动保存一次，生成一个恢复文件。恢复文件的后缀名是 “.restart”，表示刚刚生成的恢复文件；以及“.restart.old”，是前一次保存的恢复文件。- dcdfreq：dcd文件记录的就是每一个原子的运动轨迹。记录方法是，NAMD每隔一定时间间隔就将所有原子的坐标写入一次dcd文件。而这个参数就是设定写入的时间间隔。当然，dcd文件会随着模拟的进行而越来越大，如果写入很频繁或者模拟进行的时间很长，就会得到一个很大的dcd文件。另外，如果不需要得到模拟后的轨迹也可以不设定这一参数，这样NAMD将不会生成dcd文件。除了以上叙述的这些输出文件，namd还会产生一个日

45、志文件，后缀名是“.log”。这一文件的内容将在以后的内容讲到。- outputEnergies: 设定每隔多少步在日志文件中输出系统的各种能量（每种立场如范德华力，静电力分别对应一种能量）。这里我们的设定是每隔100步输出一次。- outputPressure: 同样地，这个值是为了设定每多少步在日志文件中输出一次系统压力。5、附加参数（Extra Parameters） Spherical Boundary Conditions - sphericalBC: 设定是否要设置球形边界条件。 - sphericalBCcenter: 设定球形体系的中心。输入你记下的球状水体中心的坐标。在这里我

46、们已经给出了所需要的坐标值。为了使球形边界条件可以维持，需要设定一个边界势能，使得球状水体得以保持形状而不会扩散到真空中去。以下三行参数就是设定了边界势能。 - sphericalBCr1: 设定第一个边界势能起作用的起始半径。以A为单位。 - sphericalBCk1: 设定边界势能的force constant。单位是 kcal/molA。 - sphericalBCexp1: 设定边界势能函数方程的指数值。必须是正偶数。 6、执行脚本（Execution Script）:最后一个部分，包含三个参数设定： Minimization: 在本次模拟时，一开始NAMD将不断改变各个原子的位置，

47、搜索整个体系势能的最低点（此时个原子的动能均为0），以作为动力学开始的初态。这就是能量最小化（minimization） - minimize:。这一参数设定的是能量最小化时反复改变原子位置的次数。 - reinitvels: 能量最小化时，各个原子的速度还是0。这个参数设定的是能量最小化完成之后体系升温所至的温度。在这个例子中是$temperature,即为310K。 run：设置分子动力学模拟进行的时间。以步长为单位，这里设定为2500步，即2500 fs x 2 = 5000fs，或5 ns（nanoseconds，纳秒）。7、现在关闭写字板。2.3.2 进行动力学模拟 前面说过，NAMD没有图形界面，需要打开命令行之后找到namd所在目录，然后输入namd2运行程序。运行时输入命令的格式是：namd2 配置文件位置 输出日志文