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1、 病毒灭活试验2.1.1.10.1 适用范围主要适用于消毒产品鉴定或日常监测。用具有一定代表性的、活的病毒及其细胞感染技术,评价各种用途的消毒因子对测试病毒的杀灭效果。按此方法进行的试验,只是对消毒因子的灭活病毒能力的重要方面进行验证。2.1.1.10.2 试验器材(1)试验用病毒株:脊髓灰质炎病毒 1 型(poliovirus-,PV-)疫苗株;艾滋病病毒 1 型(HIV-1)美国株。(2)宿主细胞:可采用 VERO 细胞系、BGM 细胞、Hela 细胞系或 FL细胞系,作为 PV-1 的测试细胞。用含有人 T 淋巴细胞白血病病毒 1 型(human T cell leukemiavirus
2、 1,HTLV-1)基因的人淋巴细胞(MT4 株)作为 HIV-1 的测试细胞。(3)细胞培养瓶与 96 孔培养板。(4)恒温水浴箱。(5)二氧化碳培养箱。(6)层流超净工作台。(7)低温冰箱(-20,-80)。(8)液氮罐。(9)倒置显微镜。(10)离心机。(11)可调移液器及配套一次性塑料吸头。(12)细胞维持培养基:见附录 A。(13)细胞完全培养基:见附录 A。(14)去离子水。2.1.1.10.3 病毒悬液的制备(1)从液氮中取出冻存的试验用宿主细胞,在 37温水中迅速融化,用毛细吸管移植于含有细胞维持液的细胞管内,吹吸数次,使混匀,立即离心(3000r/min,3min),去上清液
3、。再加入适当的细胞维持液,吹吸数次,使混匀,同上离心后,转种于加有 10ml 完全培养基的培养瓶中。逐日观察细胞生长情况,在细胞长满单层时,用于消毒试验。(2)取出低温冻存的试验病毒毒种,37水浴融化,用细胞维持液作 10 倍稀释,然后接种于已经长满单层细胞的细胞瓶内,置 37温箱中,使与细胞吸附、生长。逐日观察病变,待 3/4 细胞出现病变时,收获病毒。(3)将含有病毒及宿主细胞的培养液,在冰浴条件下,用超声波(或反复冻融)破碎宿主细胞,释放病毒。然后,尽快离心(6000r/min,15min)去除沉淀(主要为细胞碎片),上清液即为所需的病毒悬液。按每管 1.0ml 分装于无菌离心管(1.5
4、ml)中。(4)取 1 支病毒悬液,按病毒滴度测定法,测定其病毒滴度。其余均冷冻保存于-80备用。2.1.1.10.4 病毒灭活滴度计算方法(1)终点稀释法病毒感染滴度的计算以半数细胞感染剂量(TCID50)表示。TCID50的对数值计算公式如下。TCID50 对数值= 病变率高于 50%组稀释度的对数值 + 距离比例(“病变率高于 50% 组”是指病变率超过 50%的最低组,下简称“高于 50% 组”;“病变率低于 50%组”是指病变率低于 50%的最高组,下简称“低于 50%组”)。具体计算方法如下:1)计算细胞病变率。先计数培养板上不同稀释度样本细胞病变发生与未发生的孔数,然后分别计算“
5、细胞病变(-)”和“细胞病变(+)”的累积总计值。计算“细胞病变(-)”累积值时,由稀释度低样本组向稀释度高样本组累积;“细胞病变(+)”累积值则相反,由稀释度高样本组向稀释度低样本组累积见表 2-2。各稀释度样本组“细胞病变(+)”累积总计值,除以该稀释度样本组“细胞病变(-)”与“细胞病变(+)”累积总计值之和即为其病变比,由之可得病变率(%)见表 2-2。2)计算距离比例。距离比例可按下式计算:3)计算举例设试验数据如表 2-2 表 2-2 某消毒剂对 HIV 灭活作用的测定结果样本接种细胞病变累积值稀释度孔数-+细胞病变(-)细胞病变(+)病变比病变率(%)10-440401212/1
6、210010-5404088/810010-6413144/58010-7431411/52010-8440800/80本例,高于 50% 组病变率(%)为 80;低于 50%病变率(%)为20;高于 50%组稀释度对数值为 6。TCID50 对数值 = 60.5 = 6.5(2)噬斑法病毒感染滴度的计算噬斑法病毒感染滴度,以噬斑形成单位数(pfu),简称噬斑数表示。计数方法同活菌培养计数技术(参见 2.1.1.3)。每毫升测试样品中的病毒含量计算(pfu/ml) 平板平均噬斑数稀释倍数(3)平均灭活对数值的计算平均灭活对数值按下式计算:设阳性(病毒)对照组平均病毒感染滴度(TCID50或 pfu)的为 N0,试验(消毒)组平均病毒感染滴度(TCID50或 pfu)为 Nx。平均灭活对数值 = log Nolog Nx