醋酸纤维薄膜电泳实验(共3页).docx

《醋酸纤维薄膜电泳实验(共3页).docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《醋酸纤维薄膜电泳实验(共3页).docx（3页珍藏版）》请在得力文库 - 分享文档赚钱的网站上搜索。

1、精选优质文档-倾情为你奉上醋酸纤维薄膜电泳实验实验目的1. 了解电泳仪的结构及工作原理2. 初步掌握电泳仪的基本操作。3. 了解常用的蛋白质显色方法。实验器材醋酸纤维薄膜，pH8.6巴比妥缓冲液：称取巴比妥钠10.30g，巴比妥1.84g，溶于1000ml蒸馏水中，或者称取10.3g巴比妥钠，加1mol/L盐酸8ml，加蒸馏水至1000ml。 染色液：氨基黑10B1g溶于10ml冰醋酸与90ml甲醇的混合液中。 洗涤液：冰醋酸10ml加甲醇90ml,或者甲醇50ml，冰醋酸10ml加蒸馏水40ml. 透明液：甘油溶液，或用苯甲醇，水杨酸甲醇等溶液。 微量注射器，蛋白质样品液和电泳仪一台。实验原

2、理以醇酸纤维等制成薄膜作为支持体的电泳仪称为薄膜电泳。在一定酸碱度条件下，蛋白质分子由于基团电离而带有一定的电荷，在含有缓冲液的薄膜上，受电场力作用以一定的速度向一定的方向移动。不同的蛋白质分子，由于所带电荷的不同，移动的速度和方向也不同，从而达到分离。这种薄膜对蛋白质样品的吸附作用小，几乎完全消除纸蛋白质电泳中出现的拖尾现象，又因为薄膜的亲属性比较小，它所容纳的缓冲液也少。电泳是的电流大部分是样品在传导，因此具有简单，快速，区带清晰，灵敏度高，易于定量和便于保存的特点。本方法样品用量少，5ug的蛋白质就能得到满意的结果。因此特别适合于病理情况下微量蛋白检测。以广泛用于蛋白质和同工酶的分离分析

3、，也可以用于免疫电泳等方面。实验步骤1醋酸纤维薄膜的准备将醋酸纤维薄膜切成10cm*2.5cm的膜条，用镊子夹住缓慢放入巴比妥缓冲液中30分钟，充分浸透，取出用滤纸吸去多余的缓冲液。2点样用微量吸管将5ug但白字样品点在薄膜中英。3电泳仪湿润的薄膜条置于电泳仪的长条架子上，薄膜条两端与滤纸相接触，拉直膜条，将滤纸条的另一端浸入缓冲液中，缓冲液两槽的液面要水平，以避免虹吸现象。加盖密封，注意防止缓冲液蒸发并避免水滴落在膜条上。静止10分钟。接通电源开始电泳，调节好电压使之稳定，以20mv/cm的电场强度电泳1小时左右。4. 显色 电泳完毕后，取出膜条，用溴酚蓝显色法或者氨黑10B显色法处理，取出

4、膜条后浸入氨基黑染液中染色510分钟，然后用漂洗液洗5分钟，直到区带清晰为止。若要保存图谱或使用分光光度计直接测定，则可在膜条染色后，洗褪底色，完全干燥后，置于透明液中5分钟，取出，干后即可。思考题1醋酸纤维薄膜的特点及使用场合。2简述醋酸纤维薄膜电泳原理。 3电泳操作时应该注意哪些问题？注意事项1、醋酸纤维素薄膜的预处理 市售醋酸纤维素薄膜均为干膜片，薄膜的浸润与选膜是电泳成败的重要关键之一。将干膜片漂浮于电极缓冲液表面，其目的是选择膜片厚薄及均匀度，如漂浮15s30s时，膜片吸水不均匀，则有白斑点或条纹，这提示膜片厚薄不匀，应舍去不用，以免造成电泳后区带扭曲，界线不清，背景脱色困难，结果难

5、以重复。由于醋酸纤维薄膜亲水性比纸小，浸泡30min以上是保证膜片上有一定量的缓冲液，并使其恢复到原来多孔的网状结构。最好是让漂浮于缓冲液的薄膜吸满缓冲液后自然下沉，这样可将膜片上聚集的小气泡赶着走。点样时，应将膜片表面多余的缓冲液用滤纸吸去，以免缓冲液太多引起样品扩散。但也不能吸得太干，太干则样品不易进入薄膜的网孔内，而造成电泳起始点参差不齐，影响分离效果。吸水量以不干不湿为宜。为防止指纹感染，取膜时，应戴指套或用镊子。 2、缓冲液的选择 醋酸纤维素薄膜电泳常选用pH8.6巴比妥溶液，其浓度为0.05mol/L0.09mol/L。选择何种浓度与样品及薄膜的薄厚有关。选择时，先初步定下某一浓度

6、，如电泳槽两极之间的膜长度为8 cm10cm，则需电压25V/cm膜长，电流强度为0.4mA/cm0.5mA/cm膜宽。当电泳达不到或超过这个值时，则应增加缓冲液浓度或进行稀释。缓冲液浓度过低，则区带泳动速度快，并由于扩散变宽；缓冲液浓度过高，则区带泳动速度慢，区带分布过于集中不易分辨。 3、加样量 加样品的多少与电泳条件、样品的性质、染色方法与检测手段灵敏度密切相关。作为一般原则，检测方法越灵敏，加样量则越少，对分离更有利。如加样量过大，则电泳后区带分离不清楚，甚至互相干扰，染色也较费时。如电泳后用洗脱法定量时，每厘米加样线上需加样品0.1l0.5l约相当于5g1000g蛋白。血清蛋白常规电

7、泳分离时，每厘米加样线加样量不超过1l，相当于60g80g的蛋白质。但糖蛋白和脂蛋白电泳时，加样量则应多些。对每种样品加样量均应先作预实验加以选择。 点样好坏是获得理想图谱的重要环节之一，以印章法加样时，动作应轻、稳，用力不能太重，以免将薄膜弄坏或印出凹陷而影响电泳区带分离效果。 4、电量的选择 电泳过程应选择合适的电流强度，一般电流强度为0.4mA/cm0.5mA/cm宽膜为宜。电流强度高，尤其在温度较高的环境中，可引起蛋白质变性或由于热效应引起缓冲液中水分蒸发，使缓冲液浓度增加，造成膜片干涸。电流过低，则样品泳动速度慢且易扩散。 5、染色液的选择 对醋酸纤维素薄膜电泳后染色应根据样品的特点加以选择。其原则是染料对被分离样品有较强的着色力，背景易脱色；应尽量采用水溶性染料，不宜选择醇溶性染料，以免引起醋酸纤维素膜溶解。 应控制染色时间。时间长，薄膜底色深不易脱去；时间短，着色浅不宜区分，或造成条带染色不均，必要时可进行复染。 6、透明及保存 透明液应临用前配制，以免冰乙酸及乙醇挥发影响透明效果。这些试剂最好选用分析纯。透明前，薄膜应完全干燥。透明时间应掌握好，如在透明乙液中浸泡时间太长则薄膜溶解，太短则透明度不佳。 透明后的薄膜完全干燥后才浸入石蜡中，使薄膜软化。如有水，则液体石蜡不易浸入，薄膜不易平展。 专心-专注-专业